BRL 3A細胞形態

原代細胞傳代技術

一、貼壁細胞的消化法傳代 
1、吸除或倒掉瓶內舊培養液。
2、加入1ml左右消化液（胰蛋白酶或與EDTA混合液）輕輕搖動培養瓶，使瓶底細胞都浸入溶液中。
3、消化2-5分鐘后把培養瓶放置在顯微鏡下進行觀察，發現原貼壁的細胞逐漸趨于圓形，在還未漂起時，棄去消化液，加入培養液終止消化。
4、用吸管將貼壁的細胞吹打成懸液，分別接種到另外兩到三個培養瓶中，置37℃培養箱中繼續培養。第二天觀察貼壁生長情況。

二、懸浮細胞的傳代 
1、直接傳代
① 讓懸浮細胞慢慢沉淀在瓶底后，將上清吸掉1/2-2/3。
② 用吸管吹打形成細胞懸液后，分別接種到另外兩到三個培養瓶中，置37℃培養箱中培養。
2、離心法傳代
① 將細胞連同培養液一并轉移到離心管內，離心800-1000rpm，5分鐘。
② 去除上清，加新的培養液到離心管內，用吸管吹打使之形成細胞懸液。
③ 將細胞懸液分別接種到另外兩到三個培養瓶中，置37℃培養箱中培養。

牙髄細胞的傳代

牙髄細胞中主要是成纖維細胞，貼壁生長。

傳代方法：

棄培養液（盡量吸干）

加基礎培養基配置的0.2%trypsin+0.02%EDTA

輕輕翻轉培養瓶使消化液浸過有細胞的瓶壁

重復4～5次

迅速吸去消化液

鏡下觀察細胞變圓回縮（約1分鐘）

加入*培養液（DMEM+10% FCS）終止反應

吹打后，1:2接種，繼續培養。

大鼠系膜細胞傳代

我用的是DMEM低糖培養液，每次傳代前，將培養液，PBS，0.25％的胰酶（沒加edta）,放37度烤箱預熱（此做法是減少4度的涼液體對細胞的刺激，以防細胞死亡）。

每次換液時，一定要燒培養瓶口，做好無菌觀念。

先拋棄舊液，用PBS先沖凈殘留的血清，再加PBS用滴管輕輕的吹打細胞，將死細胞吹打掉。

加胰酶時注意：若用加edta的，記住了，在鏡下看到細胞在收縮時，趕快吸出胰酶，加血清中止消化。血清可抑制胰酶的活性，但對edta無效。前后大概不到10秒。若用沒有加edta的，時間要適當延長，看到細胞變為有立體感時，加血清，輕輕拍打，細胞就會散開。若團塊大，可用滴管吹打。

動作一點要快，不能讓細胞離開培養箱時間太長。

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